来自中科院遗传与发育生物学研究所等处的研究人员发表了题为“Precise base editing in rice, wheat and maize with a Cas9- cytidine deaminase fusion”的文章，利用Cas9变体（nCas9-D10A）融合大鼠胞嘧啶脱氨酶（rAPOBEC1）和尿嘧啶糖基化酶抑制剂（UGI），构成了高效的植物单碱基编辑系统nCas9-PBE，成功地在三大重要农作物（小麦、水稻和玉米）基因组中实现高效、精确的单碱基定点突变。

这一研究成果公布在2月27日的Nature Biotechnology杂志上，文章的通讯作者是遗传与发育生物学研究所高彩霞研究员，作为一位植物生物学家，高彩霞研究员曾利用旧技术制造了82种基因的突变，之后其研究组开始采用席卷世界各地生物学实验室的技术——CRISPR–Cas9来从事基因编辑，曾在六倍体面包小麦中成功实现了同时编辑3个同源等位基因 ，并由此赋予了小麦对白粉菌的遗传性抵抗力。去年在Nature杂志的“Science stars of China”（中国科学之星）一文中详细介绍了其研究组的工作。文章的第一作者为高彩霞研究组的博士生宗媛和王延鹏。

单核苷酸点突变是作物许多重要农艺性状发生变异的遗传基础。单碱基的变异会导致氨基酸替换或蛋白质翻译终止,使基因功能发生改变，从而有可能产生优良的等位基因与优异性状。传统诱变及单碱基突变筛选技术（如TILLING）需要进行基因组规模的筛选，耗时、耗力且鉴定到的点突变数目和种类有限。

基因组编辑技术，特别是基于CRISPR/Cas9系统的基因组编辑技术，可以在基因组靶向位点处产生DNA双链断裂（DSB），以人为提供的外源供体DNA为模板，通过同源重组（HR）介导的DNA修复途径来实现对目标基因的单碱基突变。然而，植物中同源重组效率目前非常低，很难以此实现高效的、稳定的单碱基突变。因此，植物育种和基因功能研究迫切需要新技术来提高基因组单碱基定点突变的效率，以实现基因功能与农艺性状的定向改良。

在最新这篇文章中，研究人员借鉴哺乳动物单碱基编辑方法，高彩霞研究组利用Cas9变体（nCas9-D10A）融合大鼠胞嘧啶脱氨酶（rAPOBEC1）和尿嘧啶糖基化酶抑制剂（UGI），构成了高效的植物单碱基编辑系统nCas9-PBE，成功地在三大重要农作物（小麦、水稻和玉米）基因组中实现高效、精确的单碱基定点突变。

研究人员通过在原生质体中对报告基因BFP以及三种作物中五个内源基因七个位点突变结果的详细分析, 发现nCas9-PBE可实现对靶位点DNA的C至T替换，C碱基脱氨化的窗口覆盖靶序列的7个核苷酸（距离PAM远端的第 3-9位）；其中单个C的替换效率为0.39-7.07%，多个C的替换效率高达12.48%。

通过进一步的遗传转化，研究人员利用该体系获得了靶标区域单碱基替换的小麦、水稻和玉米突变植株，突变效率最高可达43.48%。nCas9-PBE技术无需在基因组的靶位点产生DNA双链断裂（DSB），也无需供体DNA的参与，具有简单、广适、高效的特点。nCas9-PBE单碱基编辑系统成功建立和应用，为高效和大规模创制单碱基突变体提供了一个可靠方案，为作物遗传改良和新品种培育提供了重要技术支撑。